发布时间:2025-09-28
在流式细胞术实验中,准确区分活细胞与死细胞是确保数据可靠性的关键第一步。死细胞会非特异性结合抗体,导致假阳性结果,严重干扰数据分析。培镨生物将为您的实验提供一份清晰的攻略,帮助您根据实验需求选择最合适的死活染料。
一、 为什么死活染色是流式实验的“守门员”?
活细胞具有完整的细胞膜,而死细胞或凋亡细胞的细胞膜通透性会增加。死活染料正是利用这一根本差异来区分细胞状态。如果不进行死活染色,死细胞带来的“噪音”信号会:
因此,进行死活染色并设门(Gating)排除死细胞,是流式数据分析和解读的黄金标准。
二、 主流死活染料的工作原理与分类
目前主流的死活染料主要分为两大类,其原理和特性截然不同。
1. 膜完整性染料(经典方法)
这类染料不能透过活细胞的完整细胞膜,但可以进入膜受损的死细胞,并与细胞内的核酸(DNA/RNA)结合而发出强荧光。
2. 胺反应性染料(尤其适用于多色实验)
这类染料是反应性荧光分子,能与细胞蛋白质中的自由氨基(-NH2)共价结合。
工作原理:
代表染料
| Description | Excitation(nm) | Emission(nm) | Laser | Fluorescence Channel | 加入DMSO体积(uL) |
| BD Horizon Fixable Viability Stain 440UV | 338 | 436 | UV | DAPI | 363 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 450 |
406 | 450 | Violet | V450,Pacific Blue,BV421 | 400 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 510 |
408 | 512 | Violet | V500,BV510 | 260 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 575V |
396 | 572 | Violet | BV605,Pacific Orange | 340 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 520 |
498 | 521 | Blue | FITC,Alexa Fluor488 | 130 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 570 |
547 | 573 | Yellow-Green/Blue | PE | 220 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 620 |
523 | 617 | Yellow-Green/Blue | PE-CF594 | 230 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 660 |
649 | 660 | Red | APC,Alexa Fluor647 | 190 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 700 |
657 | 700 | Red | APC-R700,Alexa Fluor700 | 310 |
|
BD Horizon Fixable Viability Stain 780 |
759 | 780 | Red | AP-Cy7 | 180 |
| *Do not use reagent conjugated with these fluorochromes in the same tube. | |||||
三、 进阶技巧:如何选择可固定死活染料的颜色?
当您选择了可固定死活染料,下一步就是为其挑选合适的荧光颜色。这是多色流式 panel 设计成功的关键。 黄金法则:将最亮的荧光通道留给您最想检测的抗体,避免死活染料信号溢出到其他通道。
优先选择远红外染料(如 eFluor 780, APC-Cy7):
原因: 大多数流式抗体在远红外通道的荧光强度相对较弱。将死活染料放在这个通道,可以避免其明亮的信号“淹没”邻近通道的弱阳性信号。同时,您可以将更明亮的通道(如 FITC, PE)留给难以检测或低表达的目标抗原。
避开您 panel 中的“明星”抗体通道:
示例: 如果您要检测某个低表达的关键受体,并用PE(非常亮)标记的抗体来检测它,那么死活染料就应避免使用也被561 nm激光激发的染料(如PE-Cy5),以免光谱重叠带来补偿难题。
四、 结语与黄金法则
选择合适的死活染料是流式实验设计的基石。总结来说,我们强烈建议:
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